Diagnostiquer et traiter Leucocytozoon chez les corvidés

Guider Diagnostiquer et traiter Leucocytozoon chez les corvidésés
Groupe cible corvidésésésés et autres oiseaux
Auteur H. – helpthecrows@gmail.com
Version 2026-07-19

Version courte: Leucocytozoon est un parasite du sang aviaire. Chez les corvidésés, il peut s’agir d’une découverte fortuite, mais elle peut également devenir cliniquement importante lorsqu’un oiseau est jeune, stressé, blessé, immunodéprimé, fortement parasité ou co-infecté par d’autres parasites sanguins. Le diagnostic doit être basé sur un frottis sanguin coloré et, si possible, sur PCR. Le traitement est principalement de soutien, associé à des médicaments antiprotozoaires dirigés par un vétérinaire lorsque l’oiseau est cliniquement malade ou que la parasitémie est élevée.

Important: La section médicaments est destinée aux vétérinaires et aux rééducateurs expérimentés de la faune sauvage travaillant avec un vétérinaire. Ces médicaments peuvent causer de graves dommages si l’oiseau est déshydraté, anémique, minuscule, stressé ou si la dose est calculée à partir d’une mauvaise forme de sel/base. Ne soignez pas un oiseau sauvage sans surveillance vétérinaire.

Qu’est-ce que c’est

Leucocytozoon spp. sont des protozoaires hémosporidiens parasites des oiseaux. La plupart des espèces sont transmises par les simulies (famille Simuliidae); Leucocytozoon caulleryi est transmise par des moucherons piqueurs. Le parasite comporte des stades tissulaires et des stades sanguins. Les stades sanguins sont la partie habituellement observée sur un frottis, mais les stades tissulaires peuvent être la partie qui rend l’oiseau malade.

Un frottis positif ou un résultat PCR ne prouve pas automatiquement que Leucocytozoon est le principal problème. De nombreux oiseaux sauvages sont porteurs d’infections de faible niveau sans maladie évidente. Recherchez toujours les traumatismes, la famine, la déshydratation, les infections bactériennes, le saturnisme, l’aspergillose, les coccidies, la trichomonase et les parasites du sang mélangé.

Quand le soupçonner

  • Faiblesse, apathie, manque d’appétit, perte de poids ou échec d’amélioration malgré de bons soins de soutien.
  • Muqueuses pâles, anémie, tachypnée ou détresse respiratoire sans cause claire des voies respiratoires.
  • Crottes vertes, déshydratation, collapsus, signes neurologiques ou détérioration brutale.
  • Un jeune corvidésésésé en saison de simulies, en particulier provenant d’une zone avec de l’eau courante ou une forte pression d’insectes.
  • Frottis sanguin montrant des cellules hôtes déformées avec des gamétocytes non pigmentés.

Diagnostic

  1. Stabilisez-vous d’abord. La chaleur, l’oxygène si nécessaire, les liquides, la nutrition et une manipulation sans stress comptent plus que la recherche d’une réponse au microscope chez un oiseau instable.
  2. Faites une nouvelle goutte de sang fine. Utilisez une petite goutte de sang frais, séchez à l’air, fixez avec du méthanol et colorez avec Giemsa, Wright-Giemsa, Diff-Quik ou une autre teinture de type Romanowsky.
  3. Scannez le bord en plumes et la queue du frottis. Utilisez l’immersion dans l’huile à 1000x. Leucocytozoon les infections peuvent être de faible intensité, il est donc facile de manquer un coup d’œil rapide.
  4. Recherchez le motif, pas une cellule impaire. Les gamétocytes typiques sont gros, dépourvus de pigment brun/noir du paludisme et déforment la cellule hôte. Selon l’espèce, la cellule hôte peut être un érythrocyte, un leucocyte mononucléaire ou un thrombocyte.
  5. Utilisez PCR lorsque cela est possible. PCR sur le sang EDTA est utile en cas de faible parasitémie, pour séparer Leucocytozoon de Plasmodium et Haemoproteus, et pour détecter les infections mixtes.
  6. Utilisez CBC/biochimie comme outils de gravité. Le volume de cellules concentrées/hématocrite, les solides totaux, la configuration des leucocytes, l’état d’hydratation, les valeurs hépatiques, l’acide urique et l’état corporel aident à décider du degré de dangerosité de l’infection, mais ils ne diagnostiquent pas le parasite par eux-mêmes.
  7. Lors de l’autopsie ou de la biopsie, utiliser l’histologie. Les mégaloschizontes/mérontes peuvent être trouvés dans des tissus tels que la rate, le foie, les reins, les poumons, le cerveau ou le cœur, selon l’espèce et le stade du parasite.

Indices du microscope

  • Pas de pigment hémozoïne: contrairement à beaucoup Plasmodium et Haemoproteus étapes, Leucocytozoon les stades sanguins ne contiennent pas de pigment visible du paludisme.
  • Distorsion de la cellule hôte: la cellule infectée peut devenir ronde, ovale ou fusiforme, et le noyau de la cellule hôte peut être poussé en forme de calotte ou de bande.
  • Macrogamétocytes et microgamétocytes: les formes matures peuvent différer par la couleur des taches et l’apparence nucléaire. Utilisez plusieurs champs et comparez avec des cellules aviaires normales.
  • Attendez-vous à des chiffres faibles: les oiseaux sauvages ont souvent une faible parasitémie. L’absence sur un frottis ne l’exclut pas.
Image de frottis sanguin diagnostique pour Leucocytozoon chez un oiseau
Image diagnostique fournie pour le Corvidlove. À utiliser avec un frottis sanguin mince correctement coloré et une interprétation vétérinaire.
Deuxième image de frottis sanguin diagnostique pour Leucocytozoon chez un oiseau
Image diagnostique fournie pour Corvidlove. Comparez la forme du parasite, la distorsion des cellules hôtes et l’absence de pigment.
Leucocytozoon stades sanguins dans différentes cellules sanguines aviaires de Chagas et al. 2023
Chiffre de Chagas et al. 2023, Pathogens 12(5):712, CC BY 4.0. Source: MDPIarticle / ResearchGate pages de chiffres. Image originale: MDPI chiffres d’actif.

Principes de traitement

  • Les soins de soutien ne sont pas facultatifs. La chaleur, le calme, la correction des fluides, la nutrition, l’oxygène en cas de besoin et le traitement de la blessure ou de la maladie d’origine en constituent la base.
  • Supprimez l’oiseau des vecteurs. Gardez l’oiseau à l’intérieur ou derrière un filet anti-insectes fin. Les simulies peuvent réinfecter les oiseaux et peuvent également entretenir la transmission dans les volières.
  • Décidez si un traitement est réellement nécessaire. Un oiseau d’écurie présentant une faible parasitémie accidentelle peut n’avoir besoin que d’une surveillance et d’un traitement du véritable problème primaire. Un oiseau faible, anémique, dyspnéique ou fortement parasité mérite un traitement vétérinaire.
  • Revérifiez les frottis. Répéter PCV/hematocrit et frottis sanguins pendant le traitement et encore après le traitement. Une parasitémie en baisse accompagnée d’une amélioration de l’anémie est plus significative qu’un seul champ négatif.
  • Attendez-vous à des preuves imparfaites. Les preuves publiées sur le traitement chez les corvidésésésés sont très limitées. Une grande partie du dosage pratique provient des références du formulaire pour la sauvagine, les rapaces, la volaille et les oiseaux.

Options et dosages des médicaments

Vétérinaire uniquement. Le tableau ci-dessous utilise des ingrédients actifs et non des noms de produits. Le meilleur choix dépend de l’espèce, du poids, de l’hydratation, de l’anémie, de l’état du foie/des reins, des maladies concomitantes, des réglementations locales et du fait que PCR indique uniquement Leucocytozoon ou une infection mixte.

Ingrédient(s) actif(s) Dose rapportée dans des sources aviaires Preuve et utilisation Précautions importantes
Pyrimethamine plus acide folique ou acide folinique, souvent avec trimethoprim/sulfamethoxazole Rapport de cas de sauvagine: pyrimethamine 0.05 mg/kg PO tous les 12 h pour 30 jours; supplémentation en acide folique; trimethoprim/sulfamethoxazole 30 mg/kg PO tous les 12 h pour le premier 7 jours. Les références de type formulaire aviaire répertorient également pyrimethamine 0.5 mg/kg PO tous les 12 h pour 14-28 jours, avec 28 jours noté pour Leucocytozoon chez les rapaces. Option la plus pratique lorsqu’un oiseau cliniquement malade a été confirmé ou fortement suspecté. Leucocytozoon. Les preuves comprennent un cas de macreuse à ailes blanches traité et des références au formulaire aviaire. Le Pyrimethamine est un antagoniste des folates et peut supprimer la moelle osseuse. Le support en folate/acide folinique et la surveillance du CBC/PCV sont importants. La dose doit être calculée avec précision pour les petits oiseaux.
Trimethoprim/sulfamethoxazole 30 mg/kg PO tous les 12 h est une dose d’antiprotozoaire/sulfonamide aviaire couramment citée et a été utilisée comme premier 7 jours de traitement d’appoint dans le cas de la macreuse. Merck note que le trimethoprim/sulfamethoxazole peut diminuer la parasitémie chez les rapaces infectés, mais n’élimine pas l’infection. Utile comme traitement d’appoint ou lorsque le vétérinaire souhaite une activité sulfamide. Ce n’est pas un remède garanti. Surveillez l’hydratation, l’appétit, l’état rénal et les effets indésirables des médicaments. Il peut également être choisi pour les co-infections bactériennes, mais il s’agit d’une autre raison.
Sulfadimethoxine plus pyrimethamine Utilisé à titre préventif dans l’alimentation des volailles L. caulleryi. Les rapports publiés sur les hématozoaires aviaires incluent des combinaisons autour de sulfadimethoxine 50 mg/kg avec pyrimethamine 1 mg/kg, mais il ne s’agit pas d’un protocole validé pour les corvidésés. Approche alternative potentielle au sulfamide/pyrimethamine sous surveillance vétérinaire, en particulier lorsqu’on fait référence à une expérience avec des volailles ou des rapaces. Ne considérez pas cela comme une dose de routine pour les corvidésés. Les sulfamides et pyrimethamine peuvent être durs pour les oiseaux affaiblis. Un soutien et une surveillance en folate sont nécessaires.
Quinacrine hydrochloride Liste des références aviaires 5-10 mg/kg PO tous les 24 h pour 7-10 jours; certaines procédures sur les rapaces répertorient 5-10 mg/kg IM une fois par jour pour 7 jours. Merck note une diminution de la parasitémie Leucocytozoon-des rapaces infectés traités à la quinacrine, mais l’infection n’a pas été éliminée. Option historique/deuxième ligne. La toxicité potentielle signifie qu’il ne doit être utilisé que par un vétérinaire familier avec le traitement antiprotozoaire aviaire.
Chloroquine plus primaquine Les protocoles contre le paludisme aviaire chez les rapaces incluent chloroquine 20 mg/kg initialement, puis 10 mg/kg PO à 6, 18 et 24 h, avec primaquine 1 mg/kg PO tous les 24 h pour 2 jours; répété chaque semaine pour la prévention des rechutes dans certains protocoles. Plus établi pour Plasmodium / paludisme aviaire que pour Leucocytozoon. Considérez principalement si PCR ou un frottis suggère une infection hémosporidienne mixte et qu’un vétérinaire choisit cette voie. Marge de sécurité étroite; un surdosage peut être mortel. La dose de Primaquine est basée sur la base active et non sur le poids du comprimé. Ce n’est pas ma recommandation de premier choix pour un corvidésé avec seulement confirmé Leucocytozoon.
Atovaquone plus proguanil Harfang des neiges Plasmodium relictum protocole: atovaquone/proguanil 10/4 mg/kg PO une fois par jour pour 3 jours, répété après une semaine. Une option à discuter pour le paludisme aviaire ou mixte Plasmodium infections, pas prouvées Leucocytozoon traitement. Ne présentez pas cela comme un remède Leucocytozoon. Surveillez les marqueurs hépatiques lorsque cela est possible.

À propos des antibiotiques à large spectre

Les antibiotiques ordinaires à large spectre tels que l’amoxicilline, la doxycycline, l’enrofloxacine ou l’azithromycine ne doivent pas être décrits comme des traitements pour Leucocytozoon lui-même. Ils peuvent être nécessaires en cas de plaies bactériennes, de risque d’infection par morsure de chat, de pneumonie, de bourdon ou d’autres problèmes secondaires, mais ils ne ciblent pas de manière fiable ce parasite protozoaire. La principale exception antimicrobienne dans ce contexte est le groupe des sulfamides, en particulier le trimethoprim/sulfamethoxazole, car il a une pertinence antiprotozoaire et il est rapporté qu’il réduit la parasitémie chez les rapaces.

Un plan pratique pour un patient corvidésésésé

  1. Stabiliser: chaud, sombre, calme, oxygène si besoin, corriger la déshydratation, démarrer une alimentation adaptée.
  2. Faire un mince frottis coloré et mesurer PCV/hematocrit avant de commencer le traitement antiprotozoaire si l’oiseau est suffisamment stable.
  3. Si le frottis est positif mais que l’oiseau est stable et qu’un autre problème principal est évident, traitez le problème principal et surveillez-le.
  4. Si l’oiseau est anémique, faible, dyspnéique ou présente de nombreux parasites sur le frottis, contactez un vétérinaire aviaire et envisagez un traitement à base de pyrimethamine avec un soutien en folate et un traitement complémentaire aux sulfamides.
  5. Utilisez PCR lorsqu’il est disponible, en particulier avant d’utiliser des protocoles de type paludisme, car les infections mixtes modifient la décision de traitement.
  6. Répéter le frottis et PCV pendant le traitement. Dans le rapport sur les macreuses, les frottis ont été suivis pendant le traitement et pendant des mois après.
  7. Gardez l’oiseau à l’écart des simulies et des insectes piqueurs pendant la récupération et après la planification du lâcher.

Pronostic

Le pronostic dépend de l’oiseau, pas seulement du parasite. Un corvidésésésé légèrement positif, sinon fort, peut s’en sortir avec des soins de soutien et un traitement du véritable problème primaire. Un jeune oiseau émacié, fortement parasité, anémique ou dyspnéique a un pronostic réservé. Les oiseaux qui se rétablissent peuvent rester porteurs, l’objectif est donc la guérison clinique et la réduction de la parasitémie, pas toujours l’élimination complète de chaque stade du parasite.

Sources